ACTIVIDAD ANTIMICROBIANA IN VITRO DE UN PROPÓLEO DE SANTANDER SOBRE ENTEROCOCCUS FAECALIS

  • Laura Viviana Herrera Sandoval U. Santo Tomás
  • Marcos Humberto Pisciotti Ortega U. Santo Tomás
  • Otoniel Ramos Monsalve U. Santo Tomás
  • Laura Fernanda Neira Fuentes U. Industrial de Santander
  • Julio Roberto Pinzón Joya U. Santo Tomás
  • Adriana Victoria Herrera Becerra U. Santo Tomás
  • José Antonio Soto Salcedo U. Santo Tomás
Palabras clave: Actividad bactericida, Endodoncia, Enterococcus faecalis

Resumen

Objetivo: evaluar la actividad antimicrobiana de un extracto etanólico de propóleo de Santander sobre Enterococcus faecalis.
Materiales y métodos: se realizó un estudio experimental In vitro. A partir de un propóleo crudo del municipio de Lebrija (Santander), se obtuvo un extracto etanólico a través del método Soxhlet. La actividad antimicrobiana se determinó con una prueba de macrodilución en tubo y recuento de Unidades Formadoras de Colonias (UFC) por mL luego de 48 horas. Se evaluaron concentraciones de propóleo desde 100 hasta 0,19 mg/mL, como control se incluyeron diluciones del disolvente (etanol 96%) y se usó como medicamento de referencia la norfloxacina.
Resultados: se determinó que concentraciones de propóleo de 100 mg/mL y 50 mg/mL inhibieron 100% de crecimiento de E. faecalis. El extracto de propóleo mostró Concentración Inhibitoria 50 (CI50) de 1,19 mg/mL y Concentración Inhibitoria 90 (CI90) de 7,92 mg/mL. Mientras que la norfloxacina fue más efectiva con CI50 y CI90 de 0,06 y 2,39 µg/mL. El etanol no mostró efecto antimicrobiano a las concentraciones presentes en el extracto.
Conclusión: con el apoyo de estudios complementarios, es posible proponer al propóleo santandereano como una alternativa de irrigación y medicación en endodoncia, dado el potente efecto frente a E. faecalis siendo este el patógeno endodóntico más frecuente en infecciones persistentes.
[Herrera LV, Piscioti MH, Ramos O, Neira LF, Pinzón JR, Herrera AV, Soto JA. Actividad antimicrobiana In Vitro de un propóleo de Santander sobre Enterococcus faecalis. Ustasalud 2012; 11: 73 - 78]

Biografía del autor

Laura Viviana Herrera Sandoval, U. Santo Tomás
Bacterióloga y Laboratorista Clínico U. Industrial de Santander, Magíster en Ciencias Básicas Biomédicas U. Industrial de Santander, Docente U. Santo Tomás
Marcos Humberto Pisciotti Ortega, U. Santo Tomás
Estudiante de II año Especialización en Endodoncia U. Santo Tomás
Otoniel Ramos Monsalve, U. Santo Tomás
Estudiante de II año Especialización en Endodoncia U. Santo Tomás
Laura Fernanda Neira Fuentes, U. Industrial de Santander
Bacterióloga y Laboratorista Clínico U. Industrial de Santander
Julio Roberto Pinzón Joya, U. Santo Tomás
PhD. en Química Orgánica, Docente U. Santo Tomás
Adriana Victoria Herrera Becerra, U. Santo Tomás
Estudiante de II año Especialización en Endodoncia U. Santo Tomás
José Antonio Soto Salcedo, U. Santo Tomás
Estudiante de II año Especialización en Endodoncia U. Santo Tomás

Citas

1. Stuart CH, Schwartz SA, Beeson TJ, Owatz CB. Enterococcus faecalis: its role in root canal treatment failure and current concepts in retreatment. J Endod 2006; 32 (2): 93 – 98.

2. Foschi F, Cavrini F, Montebugnoli L, Stashenko P, Sambri V, Prati C. Detection of bacteria in endodontic samples by polymerase chain reaction assays and association with defined clinical signs in Italian patients. Oral Microbiol Immunol 2005; 20 (5): 289 – 295.

3. Sedgley CM, Nagel AC, Shelburne CE, Clewell DB, Appelbe O, Molander A. Quantitative real-time PCR detection of oral Enterococcus faecalis in humans. Arch Oral Biol 2005; 50 (6): 575 – 583.

4. Kayaoglu G, Ørstavik D. Virulence factors of Enterococcus faecalis: relationship to endodontic disease. Crit Rev Oral Biol Med 2004; 15 (5): 308 – 320.

5. Rôças IN, Siqueira JF Jr, Santos KRN. Association of Enterococcus faecalis with different forms of periradicular diseases. J Endod 2004; 30 (5): 315 – 320.

6. Menezes MM, Valera MC, Jorge AOC, Koga-Ito CY, Camargo CHR, Mancini MNG. In vitro evaluation of the effectiveness of irrigants and intracanal medicaments on microorganisms within root canals. Int Endod J 2004; 37 (5): 311 – 319.

7. Vahgela JD, Kandaswamy D, Venkateshbabu N, Jamini N, et al. Disinfection of dentinal tubules with two different formulations of calcium hydroxide as compared to 2% chlorhexidine: As intracanal medicaments against Enterococcus faecalis and Candida albicans: An In vitro study. J Conserv Dent 2011; 14 (2): 182 – 186.

8. Mattigatti S, Ratnakar P, Moturi S, Varma S, Rairam S. Antimicrobial effect of conventional root canal medicaments vs propolis against Enterococcus faecalis, Staphylococcus aereus and Candida albicans. J Contemp Dent Pract 2012; 13 (3): 305 – 309.

9. Dametto FR, Ferraz CCR, Gomes BPFDA, Zaia AA, Teixeira FB, de Souza-Filho FJ. In vitro assessment of the immediate and prolonged antimicrobial action of chlorhexidine gel as an endodontic irrigant against Enterococcus faecalis. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 2005; 99 (6): 768 – 772.

10. Bystrom A, Claesson R, Sundqvist G. The antibacterial effect of camphorated paramonochlorophenol, camphorated phenol and calcium hydroxide in the treatment of infected root canals. Endod Dent Traumatol 1985; 1 (5): 170 – 175.

11. Haapasalo M, Orstavik D. In vitro infection and disinfection of dentinal tubules. J Dent Res 1987; 66 (8): 1375 – 1379.

12. Orstavik D, Haapasalo M. Disinfection by endodontic irrigants and dressings of experimentally infected dentinal tubules. Endod Dent Traumatol 1990; 6 (4): 142 – 149.

13. Distel JW, Hatton JF, Gillespie MJ. Biofilm formation in medicated root canals. J Endod 2002; 28 (10): 689 – 693.

14. Farre R, Frasquet I, Sánchez A. Propolis and Human Health. Ars pharmaceutica 2004; 45 (1): 21 – 43.

15. Viuda-Martos M, Ruiz-Navajas Y, Fernández-López J, Pérez-Álvarez JA. Functional properties of honey, propolis, and royal jelly. J Food Sci 2008; 73: 117 – 124.

16. Murray MC, Worthington HV, Blinkhorn AS. A study to investigate the effect of a propolis-containing mouthrinse on the inhibition of de novo plaque formation. J Clin Periodontol 1997; 24 (11): 796 – 798.

17. Wieckiewicz W, Miernik M, Wieckiewicz M, and Morawiec T. Does propolis help to maintain Oral health? Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine 2013 [en línea]. URL disponible en: http://www.hindawi.com/journals/ecam/2013/351062

18. Oncag O, Cogulu D, Uzel A, Sorkun K. Efficacy of propolis as an intracanal medicament against Enterococcus faecalis. Gen Dent 2006; 54 (5): 319 - 322.

19. Al-Shaher A, Wallace J, Agarwal S, Bretz W, Baugh D. Effect of propolis on human fibroblasts from the pulp and periodontal ligament. J Endod. 2004; 30 (5): 359 – 361.

20. Moreno Z, Martínez P, Figueroa J. Efecto antimicrobiano In vitro de propóleos argentinos, colombianos y cubano sobre Streptococcus mutans ATCC 25175. Nova 2007; 5 (7): 70 – 75.

21. Tolosa L, Cañizares E. Obtención, caracterización y evaluación de la actividad antimicrobiana de extractos de propóleo de campeche. ARS Farmacéutica. 2002; 43 (1): 187 – 204.

22. Campo M, Cuesta O, Rosado A, Montes R. Márquez I, Piccinelli, A Rastrelli, L. GC-MS Determination of Isoflavonoids in seven red cuban propolis samples. J Agric Food Chem 2008; 56 (21): 9927 – 9932.

23. Wikler M, Cockerill FR, Craig WA, Dudley MN, Eliopoulos GM, Hecht DW, Hindler JF et al. Methods for dilution antimicrobial susceptibility test for bacteria that growth aerobically. Approved standard. Seventh Edition; 2006 [en línea] 20 (2). URL disponible en: http://isoforlab.com/phocadownload/csli/M7-A7.pdf

24. Quiñones D, Marrero D, Falero B, Tamargo I, Llop A, Kobayashi N, Del Campo R. Susceptibilidad antimicrobiana y factores de virulencia en especies de Enterococcus causantes de infecciones pediátricas en Cuba. Revista Cubana de Medicina Tropical 2006; 60 (2): 123 – 129.

25. Awawdeh L, AL-Beitawi M, and Hammad M. Effectiveness of propolis and calcium hydroxide as a short-term intracanal medicament against Enterococcus faecalis: A laboratory study. Aust Endod J. 2009; 35: 52 – 58.

26. Kayaoglu G, Ömürlü H, Akca G, Gürel M, Gencay Ö, Sorkun K, Salih B. Antibacterial activity of Propolis versus conventional endodontic disinfectants against Enterococcus faecalis in infected dentinal tubules. J Endod. 2011; 37 (3): 376 – 381.

27. Cortés D, Pachón M, Riaño S, Tovar E, Rojas S. Actividad antimicrobiana del propóleo colombiano en agua destilada, solución salina al 0,9% y etanol al 98% sobre Enterococcus faecalis [Trabajo de Grado]. Bogotá: Universidad Santo Tomás, 2010.

28. Ferreira FB, Torres SA, Rosa OP, Ferreira CM, García RB, Marcucci MC, Gómez BP. Antimicrobial effect of propolis and other substances against selected endodontic pathogens. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 2007; 104: 709 – 716.

29. Lima ME. Evaluación In vitro de la actividad del paramonoclorofenol alcanforado, clorhexidina al 2% y extracto de propolis al 50% sobre tres bacterias encontradas en el interior del canal radicular. Revista de la Sociedad Chilena de Endodoncia 2007; 15: 16 – 19.

30. Scazzacchia F, Auria FD, Alessandrini D, Pantanella F. Multifactorial aspects of antimicrobial activity of propolis. Microbiol Res 2006; 161: 327 – 333.

31. Bankova V, Christov R, Kujumgiev A, Marcucci MC, Popov S. Chemical composition and antibacterial activity of propolis (Bee Glue). Z Naturforsch 1995; 50: 167 – 172.

32. Catchpole O, Grey J, Mitchell K, Lan J. Supercritical antisolvent fractionation of propolis tincture. Journal of Supercritical Fluids 2004 [en línea]; 29: 97–106. URL disponible en: http://www.isasf.net/fileadmin/files/Docs/Versailles/Papers/PN52.pdf

33. Jahromi M, Toubayani H, Rezaei M. Propolis: A new alternative for root canal disinfection. Int Endod J 2012; 7 (3): 127 – 133.

34. Awawdeh L, AL-Beitawi M, and Hammad M. Effectiveness of propolis and calcium hydroxide as a short-term intracanal medicament against Enterococcus faecalis: A laboratory study. Aust Endod J 2009; 35: 52 – 58.
Publicado
2012-07-01
Sección
Artículos de Investigación Científica y Tecnológica